TE: 0351-4334171/68
Int. 216
Fax: 0351-4334074
hbarra@dqb.fcq.unc.edu.ar

Dr. Hector S. Barra
Invest. Superior del CONICET
Profesor Emerito de la UNC.

 



TE: 0351-4334171/68
Int. 227
Fax: 0351-4334074
caecra@dqb.fcq.unc.edu.ar
Dr. Carlos Arce
Invest. Principal del CONICET
Profesor Titular de la UNC

  
 

Departamento de Química Biológica, Facultad de Ciencias Químicas, Universidad Nacional de Córdoba, Haya de la Torre s/n Ciudad Universitaria, 5000 Córdoba, Argentina

Regulación de la actividad de la Na+,K+-ATPasa por tubulina acetilada. 

 
  En nuestro laboratorio nosotros encontramos que la tubulina de membrana de cerebro que se aísla como un compuesto hidrofóbico está asociada a la subunidad alfa de la Na + ,K+-ATPasa. Esta tubulina está constituida principalmente por el isotipo acetilado. La asociación de la tubulina acetilada con la Na+,K+-ATPasa inhibe la actividad de ésta enzima tanto in vitro como in vivo. Empleando astrocitos en cultivo nosotros encontramos que la estimulación de la actividad de la Na+,K+-ATPasa por L-glutamato correlaciona con una caída en la cantidad de tubulina acetilada asociada. La disociación del complejo tubulina acetilada/Na+,K+-ATPasa es, aparentemente, mediada a través de transportadores de glutamato, no por receptores específicos de glutamato. Nosotros estamos investigando el rol del citoesqueleto en la asociación/disociación del complejo tubulina acetilada/Na+,K+-ATPasa. También se están realizando estudios acerca de la regulación de H+-ATPasa y Ca++-ATPasa por tubulina acetilada.
 
 
Tirosinación/detirosinación post-traducción de la tubulina
 
 

   Actualmente, el interés del grupo es dilucidar el rol fisiológico de la tirosinación/detirosinación post-traduccional de la tubulina. Como estrategia, estamos intentando modificar el terminal-COOH de la cadena de alfa tubulina de diversas maneras con la esperanza de detectar alguna alteración en el funcionamiento de la célula. El conocimiento de la función alterada podría servirnos para concebir una idea respecto al rol de esta modificación post-traduccional, y llevar a cabo los experimentos apropiados para confrontar las hipótesis planteadas. Estamos intentando modificar el terminal-COOH por dos métodos:1) substituyendo la tirosina del terminal-COOH por análogos de tirosina; hasta ahora hemos encontrado varios análogos con la capacidad de incorporarse en tubulina en lugar de tirosina, 2) transfectando células con el gen de la alfa-tubulina previa modificación del codón que corresponde a tirosina del terminal-COOH por otro aminoácido o alargando o acortando el terminal-COOH por pocos aminoácidos. Además de la morfología celular, la tasa de proliferación, la viabilidad celular, y la arquitectura de red del citoesqueleto, estamos planeando examinar el efecto en funciones más sutiles de las modificaciones introducidas en tubulina, tales como dinámica del microtúbulo, transporte intracelular, la asociación de enzimas, los motores y las MAPs (Microtubule Associated Proteins), interacción con otros elementos citoesqueléticos, la adherencia al substrato, la asociación con los compuestos implicados en la señalización celular, interacciones célula-célula, etc.